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Eismanagement und Gefrierdehydrierung von Pflanzenzellen

Ice Management and Freeze Dehydration of Plant Cells

Gilbert Neuner (ORCID: 0000-0003-2415-6125)
  • Grant-DOI 10.55776/P30139
  • Förderprogramm Einzelprojekte
  • Status beendet
  • Projektbeginn 01.01.2018
  • Projektende 31.12.2021
  • Bewilligungssumme 397.361 €

Wissenschaftsdisziplinen

Biologie (100%)

Keywords

    Frost Resistance Mechanisms, Cell Wall Elasticity, Ice Tolerance, Subcellular Changes, Freezing Cytorrhysis, Low Temperature Stress

Abstract Endbericht

Pflanzen im Gegensatz zu anderen Organismen - können nicht davonrennen. Sie sind fest eingewurzelt und müssen daher die einwirkenden Umweltfaktoren in vollem Ausmaß bewältigen können. Dies haben sie auch hervorragend zu meistern gelernt. Dennoch wird die Rekrutierung, das Überleben, die Produktivität und die geographische Verbreitung von Pflanzen empfindlich durch abiotische Stressfaktoren gefiltert. Neben der Wasserverfügbarkeit stellt vor allem das Auftreten von Frostereignisse einen limitierenden Faktor dar. Dennoch gibt es substantielle Lücken in unserem Wissen über Frostschädigung und das Überleben von Gefrierereignissen durch Pflanzen. Ganz besonders über die subzellulären physiologischen Veränderungen, die dabei eine entscheidende Rolle spielen dürften. Eine der auffälligsten Veränderungen beim Gefrieren ist die Umwandlung von flüssigem Wasser zu Eis. Während eisempfindliche Pflanzenzellen unmittelbar bei Eisbildung im Gewebe abgetötet werden, überleben eistolerante Pflanzenzellen extrazelluläre Eisbildung völlig unbeschadet. Extrazelluläres Eis entzieht den Zellen Wasser. Diese Gefrierentwässerung ist temperaturabhängig. Zusätzlich wird die Gefrierentwässerung von der Zellwandfestigkeit beeinflusst, was derzeit aber weniger gut verstanden wird. Bei extrazellulärer Eisbildung tolerieren eistolerante Pflanzenzellen entweder eine Gefrierentwässerung, die sich im extrem bis zu einer nicht letalen Gefrierzytorrhyse (Zellen kollabieren und verlieren reversibel bis zu 80% des Zellwassers) ausdehnen kann, oder überleben tiefunterkühlt (supercooling). In tiefunterkühlenden Zellen verbleibt das Zellwasser in den Zellen in flüssiger Form, aber unterhalb einer bestimmten Gefriertemperatur frieren die Zellen dann spontan intrazellular aus. Intrazelluläres Gefrieren ist immer letal. Die nötigen subzellulären physiologischen Veränderungen, die Gefrierentwässerung bzw. Tiefunterkühlbarkeit zulassen, und besonders die Rolle der Zellwand ist derzeit unbekannt. Durch Einsatz von hochauflösenden zellbiologischen und biophysikalischen Verfahren sollen subzelluläre Veränderungen, die am Ausmaß, der Geschwindigkeit und der Dynamic der Gefrierentwässerung und Tiefunterkühlbarkeit beteiligt sind, sowie Anteil an der Frostschädigung haben, an Hand von 14 Pflanzenarten mit unterschiedlichen Zellwandeigenschaften untersucht werden. Chemische Komponenten und strukturelle Zellwandeigenschaften sollen als Attribute der zusätzlich zu messenden Zellwandelastizität charakterisiert werden und mit dem spezifischen Gefrierverhalten in Beziehung gesetzt werden. In einem ökophysiologischen Blickwinkel soll das Gefrierverhalten mit der spezifischen Gefrierbelastungssituation (Häufigkeit und Intensität) am natürlichen Wuchsort in Beziehung gesetzt werden. Die Ergebnisse lassen Auswirkungen für Anwendungen in Zusammenhang mit Cryo- und Lyo-Techniken erwarten, können aber auch neue Strategien zum Transfer gesteigerter Frosthärte in Agrarpflanzen liefern. Zudem erscheinen die Ergebnisse ganz besonders zeitgemäß, da der prognostizierte Klimawandel Pflanzen vor ganz besondere Herausforderung stellt. Dies mag zwar zunächst paradox erscheinen, aber durch die wärmeren Winter treiben Pflanzen verfrüht aus und werden so unvorbereitet Wetterkapriolen ausgesetzt. Als Vorgeschmack können die verheerenden Spätfrostschäden im Frühjahr 2007 in den USA gelten. Die Ergebnisse zum Gefrierverhalten von Pflanzenzellen werden eine solide Basis für das Verständnis struktureller, zellulärer und physiologischer Mechanismen liefern, die es Pflanzen erlauben einer Frostschädigung zu entkommen und zudem eine sicherere Risikoabschätzung bezüglich Frostschäden in einem sich wandelnden Klima möglich machen.

Im Gegensatz zu vielen anderen Organismen können Pflanzen Eisbildung in ihrem Gewebe überleben. Wie dies möglich ist, ist noch kaum verstanden. Prinzipiell kann nur extrazelluläre Eisbildung überlebt werden, intrazelluläre Eisbildung ist immer letal. Mit der Entwicklung eines neuen Kryomikroskops wurde erstmals die eindeutige Unterscheidung zwischen Eis und flüssigem Wasser in gefrorenen Blättern möglich. Strukturell unterschiedliche, photosynthetisch aktive Zellen, die in Algen bis hin zu Bäumen vorkommen, wurden untersucht. Die Zellwandfestigkeit stellte sich als ein Schlüssel für die Gefrierdehydrierung heraus. In Koniferennadeln erzeugen steife Zellwände eine negative Spannung und verhindern eine Gefrierdehydrierung. Im gefrorenen Zustand bleibt Eis auf den Leitgefäßzylinder beschränkt. Eisfreies Photosynthesegewebe ermöglicht freien Gasaustausch. An der Baumgrenze, wo Frost länger als 6 Monate anhält, scheint dies bedeutsam. In Kartoffelblättern tolerieren Zellen Eis bei moderatem Gefrieren (> -3C) und für eine begrenzte Dauer (10-80 min). Die Zellen bleiben unterkühlt und werden durch intrazelluläre Eisbildung getötet. Für die Kartoffelzüchtung bedeutet dies, dass einzig Frostvermeidungsstrategien zielführend sein können. Während unterkühlende Kartoffelzellen durch intrazelluläre Eisbildung abgetötet werden, konnte dies in Mesophyllzellen von Nadelbäumen nicht beobachtet werden, für die die Frostschädigungsursache ungeklärt bleibt. Im Gegensatz zu unterkühlenden Zellen zeigte die Mehrheit der 14 getesteten Arten Gefrierdehydrierung und Zytorrhyse bei Eisbildung. Neben den Zellwandeigenschaften waren die Zellabmessungen, der relative Flächenanteil der Interzellularzellen und das Verhältnis von Zellwanddicke zu Durchmesser wichtige Faktoren. Die nivale Pflanze Ranunculus glacialis ist ein Beispiel, wo Zellen beim Einfrieren zytorrhysiert werden. Riesige Eismassen bilden sich in den Interzellularräumen ausschließlich im Schwammparenchym. Die Zellwände sind reich an Pektin und Triglyceride akkumulieren vor allem im Schwammparenchym. Deren Rolle für das Wachstum extrazellulärer Eismassen müssen weitere Untersuchungen klären. Außerdem wurde ein völlig neuer technischer Ansatz entwickelt, um gefrorene Blätter für die Elektronenmikroskopie zu fixieren. Diese Entwicklung brachte ungeahnte Einblicke. Auffällige ultrastrukturelle Veränderungen in extrazellulär gefrorenen Zellen reichten von der Aggregation und Verschmelzung von Mitochondrien zu dreidimensionalen Netzwerken bis hin zu Anzeichen von Abbau und dem Auftreten von autophagischen Strukturen. Es wird angenommen, dass diese Veränderungen die Aufrechterhaltung der Atmung während des Einfrierens ermöglichen. Autophagie und degenerative Prozesse können auf ein Recycling von beeinträchtigten zytoplasmatischen Bestandteilen hindeuten, was wichtig erscheint, um den Zellstoffwechsel während des Einfrierens aufrechtzuerhalten. In einem wärmer werdenden Klima ist auch das Überleben von Frost eine Herausforderung für Pflanzen. Das mag auf den ersten Blick kontraintuitiv klingen. Wärmere Winter wirken sich jedoch auf die Pflanzenphänologie aus und setzen sie unvorbereitet unberechenbaren Wetterkapriolen aus. Jüngste und wiederholt auftretende, verheerende Frühjahrsfrostschäden an Kulturpflanzen mögen ein Vorgeschmack sein. Ein verbessertes Wissen über des Kryoverhalten von Pflanzenzellen, wie es hier gewonnen wurde, ist eine Voraussetzung für das Verständnis zytologischer und physiologischer Mechanismen, die ein Überleben von Frostschäden ermöglichen. Die Ergebnisse können wertvolle Hinweise liefern, wie Frosttoleranz bei Nutzpflanzen verbessert werden könnte.

Forschungsstätte(n)
  • Universität Salzburg - 60%
  • Universität Innsbruck - 40%
Nationale Projektbeteiligte
  • Othmar Buchner, Universität Salzburg , assoziierte:r Forschungspartner:in

Research Output

  • 187 Zitationen
  • 20 Publikationen
Publikationen
  • 2023
    Titel Frozen mountain pine needles: The endodermis discriminates between the ice-containing central tissue and the ice-free fully functional mesophyll
    DOI 10.1111/ppl.13865
    Typ Journal Article
    Autor Buchner O
    Journal Physiologia Plantarum
  • 2022
    Titel Responses to Ice Formation and Reasons of Frost Injury in Potato Leaves
    DOI 10.3390/crops2040026
    Typ Journal Article
    Autor Stegner M
    Journal Crops
    Seiten 378-389
    Link Publikation
  • 2022
    Titel Freeze dehydration vs. supercooling of mesophyll cells: Impact of cell wall, cellular and tissue traits on the extent of water displacement
    DOI 10.1111/ppl.13793
    Typ Journal Article
    Autor Stegner M
    Journal Physiologia Plantarum
    Link Publikation
  • 2021
    Titel Winter survival of the unicellular green alga Micrasterias denticulata: insights from field monitoring and simulation experiments
    DOI 10.1007/s00709-021-01682-6
    Typ Journal Article
    Autor Steiner P
    Journal Protoplasma
    Seiten 1335-1346
    Link Publikation
  • 2021
    Titel Protective Role of Ice Barriers: How Reproductive Organs of Early Flowering and Mountain Plants Escape Frost Injuries
    DOI 10.3390/plants10051031
    Typ Journal Article
    Autor Bertel C
    Journal Plants
    Seiten 1031
    Link Publikation
  • 2018
    Titel Ionic stress induces fusion of mitochondria to 3-D networks: An electron tomography study
    DOI 10.1016/j.jsb.2018.06.010
    Typ Journal Article
    Autor Steiner P
    Journal Journal of Structural Biology
    Seiten 52-63
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Low temperatures at higher elevations require plants to exhibit increased freezing resistance throughout the summer months
    DOI 10.1016/j.envexpbot.2019.103882
    Typ Journal Article
    Autor Neuner G
    Journal Environmental and Experimental Botany
    Seiten 103882
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Additional file 3 of A new technical approach for preparing frozen biological samples for electron microscopy
    DOI 10.6084/m9.figshare.12097146.v1
    Typ Other
    Autor Buchner O
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Additional file 3 of A new technical approach for preparing frozen biological samples for electron microscopy
    DOI 10.6084/m9.figshare.12097146
    Typ Other
    Autor Buchner O
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Additional file 2 of A new technical approach for preparing frozen biological samples for electron microscopy
    DOI 10.6084/m9.figshare.12097137.v1
    Typ Other
    Autor Buchner O
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Additional file 2 of A new technical approach for preparing frozen biological samples for electron microscopy
    DOI 10.6084/m9.figshare.12097137
    Typ Other
    Autor Buchner O
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Additional file 1 of A new technical approach for preparing frozen biological samples for electron microscopy
    DOI 10.6084/m9.figshare.12097131.v1
    Typ Other
    Autor Buchner O
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Additional file 1 of A new technical approach for preparing frozen biological samples for electron microscopy
    DOI 10.6084/m9.figshare.12097131
    Typ Other
    Autor Buchner O
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Winter Nights during Summer Time: Stress Physiological Response to Ice and the Facilitation of Freezing Cytorrhysis by Elastic Cell Wall Components in the Leaves of a Nival Species
    DOI 10.3390/ijms21197042
    Typ Journal Article
    Autor Stegner M
    Journal International Journal of Molecular Sciences
    Seiten 7042
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Fusion of Mitochondria to 3-D Networks, Autophagy and Increased Organelle Contacts are Important Subcellular Hallmarks during Cold Stress in Plants
    DOI 10.3390/ijms21228753
    Typ Journal Article
    Autor Steiner P
    Journal International Journal of Molecular Sciences
    Seiten 8753
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Cell Wall Reinforcements Accompany Chilling and Freezing Stress in the Streptophyte Green Alga Klebsormidium crenulatum
    DOI 10.3389/fpls.2020.00873
    Typ Journal Article
    Autor Steiner P
    Journal Frontiers in Plant Science
    Seiten 873
    Link Publikation
  • 2020
    Titel A new technical approach for preparing frozen biological samples for electron microscopy
    DOI 10.1186/s13007-020-00586-5
    Typ Journal Article
    Autor Buchner O
    Journal Plant Methods
    Seiten 48
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Ice accommodation in plant tissues pinpointed by cryo-microscopy in reflected-polarised-light
    DOI 10.21203/rs.3.rs-20427/v2
    Typ Preprint
    Autor Stegner M
    Link Publikation
  • 2020
    Titel Ice accommodation in plant tissues pinpointed by cryo-microscopy in reflected-polarised-light
    DOI 10.1186/s13007-020-00617-1
    Typ Journal Article
    Autor Stegner M
    Journal Plant Methods
    Seiten 73
    Link Publikation
  • 2019
    Titel New Insights in Potato Leaf Freezing by Infrared Thermography
    DOI 10.3390/app9050819
    Typ Journal Article
    Autor Stegner M
    Journal Applied Sciences
    Seiten 819
    Link Publikation

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