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Elektronenweiterleitung

Routing the flow of electrons...

Roland Ludwig (ORCID: 0000-0002-5058-5874)
  • Grant-DOI 10.55776/P31019
  • Förderprogramm Einzelprojekte
  • Status beendet
  • Projektbeginn 01.09.2018
  • Projektende 28.02.2022
  • Bewilligungssumme 399.262 €
  • Projekt-Website

Wissenschaftsdisziplinen

Biologie (30%); Chemie (40%); Industrielle Biotechnologie (30%)

Keywords

    GMC oxidoreductases, Cellobiose Dehydrogenase, Lytic Polysaccharide Monooxygenase, Chimeric Enzymes, Direct Electron Transfer, Biosensors

Abstract Endbericht

Das Projekt untersucht die Funktion der Cytochromdomäne (CYT) des Pilzenzyms Cellobiosedehydrogenase (CDH) als elektronenleitende Einheit für andere Oxidoreduktasen. Die Kombination vonCYT und verschiedenenGlukose-Methanol-Choline(GMC) Oxidoreduktasen zu chimären Flavocytochromen soll den Elektronenfluss vom katalytischen Zentrum zu einer Arbeitselektrode umleiten. Die Abhängigkeit der Enzyme von Kosubstraten wie Sauerstoff, Chinonen oder Redoxmediatorensolldadurchin einendirekten Elektronentransfer (DET) an die Arbeitselektrode ersetzt werden. Elektronen sind eine sehr kostengünstige und umweltfeundliche Art Reduktionsäquivalente zur Verfügung zu stellen. CYT-modifizierte GMC Oxidoreduktasen die einen schnellen und effizienten DET aufweisen, sind für Biosensoren und die Bioelektrokatalyse sehr interessant. Der Mechanismus und die Kinetik der Cytochromdomäneninteraktion mit drei GMC Oxidoreduktasen (Arylalkoholoxidase, Alcoholoxidase und Glukosedehydrogenase) wird vergleichend mit der der CDH untersucht werden. In weiterer Folge wird das Projekt auch die Interaktion von isolierten, auf Elektroden immobilisierten Cytochromdomänen mit freien, gelösten GMC Oxidoreduktasen und lytischer Polysaccharidmonooxygenase untersuchen.Hierbei dient die Cytochromdomäneals elektrischer Kontakt für diese Oxidoreduktasen. Das Projekt soll den Mechanismus der Domäneninteraktion untersuchen und den Einfluss der Cytochromdomänenorientierung und mobilität durch schnellebiochemischeund elektrochemische Methodenaufklären. Schlussendlich soll über die Eignung der hergestellten CYT-GMC Chimären und der CYT- modifizierten Elektroden für Biosensoren und die Bioelektrokatalyse befunden werden.

Die Kernaufgabe des Projekts bestand darin, neue Wege zum Einsatz von Enzymen in Biosensoren zu erforschen. Enzyme übernehmen in Biosensoren die Aufgabe eines spezifischen Detektors, der selbst in komplexen Medien wie Nahrungsmitteln oder medizinischen Proben den Analyten (die zu bestimmende Substanz) mit hoher Spezifität erkennt und dessen Konzentration mit hoher Genauigkeit bestimmt. Die Verbindung von Enzym mit der Messelektrode ist hierfür sehr wichtig, ist aber nur selten der Gegenstand von Grundlagenforschung. Im Projekt "Electron flow" haben wir Enzyme der GMC-Oxidoreduktase Familie untersucht, die vielfach in Biosensoren, z.B. zur Messung von Blutglukose, zur Anwendung kommen. Die Elektronen die in der Nachweisreaktion (Glukose wird zu Glukonsäure oxidiert) freigesetzt werden, können über Mediatoren zur Elektrode weitergeleitet werden, was aber häufig durch Störsubstanzen gestört wird. Durch die Etablierung eines direkten Kontakts des Enzyms mit der Messelektrode wird das vermieden. Dazu bedarf es aber eines gekoppelten Elektronentransferproteins. In der Natur erfüllen verschiedene Cytochrome diese Funktion. Die Forscherinnen und Forscher des Projekts haben daher mit bioinformatischen Methoden aus über 1500 Cytochromen acht passende ausgewählt, hergestellt und charakterisiert. Cytochrome aus Bakterien und Pilzen mit einem passenden Redoxpotential und einer guten Elektronenweiterleitung wurden mit verschiedenen molekularbiologischen und biochemischen Methoden an das Enzym Glukosedehydrogenase gekoppelt um den gewünschten direkten Elektronentransfer zu erzielen. Die geschaffenen Fusionsenzyme zeigen das gewünschte Verhalten, aber in noch zu geringem Ausmaß für die kommerzielle Verwertung. Im Projekt wurden weiterführende Möglichkeiten zur Verbesserung des Elektronentransfers mit Hilfe von Simulationen untersucht und Lösungsansätze zur Erhöhung der Sensorsensitivität erarbeitet. Eine Kombination aus Proteinengineering am Interface der beiden Proteine und verbesserten Immobilisierungsverfahren der Enzyme auf der Elektrode wird für zukünftige Foschungs- und Entwicklungsprojekte empfohlen.

Forschungsstätte(n)
  • Universität für Bodenkultur Wien - 100%
Internationale Projektbeteiligte
  • Miguel Alcalde, CSIC - Spanish National Research Council - Spanien
  • Pimchai Chaiyen, Mahidol University - Thailand
  • Phil Bartlett, University of Southampton - Vereinigtes Königreich

Research Output

  • 78 Zitationen
  • 4 Publikationen
  • 1 Wissenschaftliche Auszeichnungen
Publikationen
  • 2023
    Titel Interdomain Linker of the Bioelecrocatalyst Cellobiose Dehydrogenase Governs the Electron Transfer
    DOI 10.1021/acscatal.3c02116
    Typ Journal Article
    Autor Zhang L
    Journal ACS Catalysis
    Seiten 8195-8205
    Link Publikation
  • 2023
    Titel Electrochemical and biosensing properties of an FAD-dependent glucose dehydrogenase from Trichoderma virens
    DOI 10.1016/j.bioelechem.2023.108480
    Typ Journal Article
    Autor Wijayanti S
    Journal Bioelectrochemistry
    Seiten 108480
    Link Publikation
  • 2023
    Titel Redox potential of FAD-dependent glucose dehydrogenase
    DOI 10.1016/j.elecom.2022.107405
    Typ Journal Article
    Autor Schachinger F
    Journal Electrochemistry Communications
    Seiten 107405
    Link Publikation
  • 2023
    Titel Cytochromes as electron shuttles from FAD-dependent glucose dehydrogenase to electrodes
    DOI 10.1016/j.electacta.2023.142485
    Typ Journal Article
    Autor Schachinger F
    Journal Electrochimica Acta
    Seiten 142485
    Link Publikation
  • 2021
    Titel Amperometric Biosensors Based on Direct Electron Transfer Enzymes
    DOI 10.3390/molecules26154525
    Typ Journal Article
    Autor Schachinger F
    Journal Molecules
    Seiten 4525
    Link Publikation
  • 2021
    Titel A cytochrome b-glucose dehydrogenase chimeric enzyme capable of direct electron transfer
    DOI 10.1016/j.bios.2021.113704
    Typ Journal Article
    Autor Viehauser M
    Journal Biosensors and Bioelectronics
    Seiten 113704
    Link Publikation
Wissenschaftliche Auszeichnungen
  • 2019
    Titel BioTrans 2019, July 7-11, 2019, Groningen, The Netherlands
    Typ Personally asked as a key note speaker to a conference
    Bekanntheitsgrad Continental/International

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